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HHUCenter for Advanced ImagingGalerie

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Immunogold labelling of Myelin Oligodendrocyte Glycoprotein (MOG) in myelin sheaths of a mouse brain was performed using cryosections according to the Tokuyasu method; scale bar 200 nm. Miriam Bäumers

Analysis of the surface of a metal sample after treatment. The sample was scanned in reflection mode using the Leica TCSSP8 3X and the resulting signals were color coded according to depth. Sample Nicole Rauch, Imaging Sebastian Hänsch

Blattunterseite vom Oleander (Nerium oleander) mit behaarten Höhlen, in denen die Spaltöffnungen liegen. Abdruckverfahren mit Abformmaterialien aus Vinylpolysiloxan mit Epoxidharz ausgegossen. V-Modul 440-Evolution der Pflanzen. REM Zeiss SUPRA 55VP

Semi dissociated cortical organoids at day 70 stained for neural progenitor cells: SOX2 (magenta) and neurons: MAP2 (green). | Olympus FV3000

Differentiated F11 cell line, hybrids derived from the fusion of rat embryonic dorsal root ganglion and mouse neuroblastoma captured at Operetta CLS. Stained for nuclear marker with Hoechst33342 and neuronal marker beta-tubulin III. Scale bar 50 µm. (AG Lammert)

HEp-2 Zelle, die über Nacht mit 2% Glutaraldehyd und 0.1M Cacodylat Puffer fixiert wurde, die Zelle ist zusätzlich mit Osmiumtetroxid behandelt. REM Zeiss Supra 55 VP; CAi-Modul WS 22/23, EM-Projekt: Michael Johannis | Fabienne Blesing | Meggie-Lorraine Bergmann | Jan Patrick Neunkirchen

Accessory gland of Drosophila melanogaster that is a prostate equivalent. Nuclei of secondary cells are expressing GFP (green). Whole tissue scan at the Operetta CLS by Irfan Akhtar showed as maximum intensity projection. Scale bar 100 µm

Nahaufnahme der Seeanemone Nematostella vectensis; Nikon Stereomikroskop SMZ 25 | © Hanna Domin & Lucy Sauereßig | Zoologie und Organismische Interaktionen | HHU

Hochauflösende mikroskopische Aufnahme von Vimentin, einem zytosolischen Strukturfilament, in einer menschlichen HEp-2 Zelle. Der große dunkle Bereich in der Mitte zeigt die Position des Zellkerns an, der kein Vimentin enthält. Die Strukturen wurden immungefärbt unter Verwendung von Antikörper-konjugiertem Abberior Star 635P-Farbstoff, und Bilder wurden aufgenommen mittels "stimulated emission depletion" (STED) STEDYCON-Modul, montiert auf einem Nikon-Stativ; © Sebastian Hänsch | CAi | HHU

Flagellat Angomonas deanei mit sich teilendem bakteriellen Endosymbionten; Zeiss Transmissionselektronenmikroskop EM 902; © Jorge Morales | Mikrobielle Zellbiologie | HHU & Marion Nissen | CAi | HHU

Konfokale Aufnahme eines Arabidopsis-Mesophyll-Protoplasten, der ein hypothetisches Zuckertransporter-Gen exprimiert, das mit Yellow Fluorescent Protein (YFP) fusioniert ist. Die bemerkenswerten netzwerkartigen Strukturen lassen auf eine Proteinakkumulation am endoplasmatischen Retikulum schließen. Leica TCS SP8 STED 3X; © Diana Weidauer & Jiyun Kim | Molekulare Physiologie | HHU

Lipid Tröpfchen in Drosophila melanogaster KC167-Zellen aus Hochdurchsatz-Mikroskopie Experimenten zu Lipidspeichermechanismen. Farbige Umrisse kennzeichnen einzelne Zellen, basierend auf automatischer Bildverarbeitung und Zellsegmentierung. Operetta CLS high-content screening system; © Eugenia Chartschenko | Systembiologie des Fettstoffwechsels | HHU

Gezeigt sind GFAP-markierte Gliazellen (Rot) und Zellkerne (Blau) in CA 1 Stratum Radiatum und Pyramidenzellschicht (unten) des Maus Hippocampus. Nikon 90i ; © Laura Petersilie, Katharina Everaerts, Taha Ben Amor | Neurobiologie | HHU

Sicht in ein Sinusoid (kleines Blutgefäß) der Mausleber mit zwei Erythrozyten (jeweils oben links und rechts). Die spezialisierten sinusoidalen Leberendothelzellen der Gefäßwände besitzen Poren (Fenestrae), die den direkten Austausch von Molekülen zwischen Blut und Hepatozyten erlauben. Zeiss Rasterelektronenmikroskop Leo 1430 VP; © Daniel Eberhard | Stoffwechselphysiologie & Steffen Köhler | CAi | HHU

Mitteldarm von Drosophila melanogaster. Die Nachkommen von intestinalen Stammzellen wurden für eine Woche bei erwachsenen weiblichen Fliegen mit einem neuem esgReDDM-Tracing-System markiert. Stamm- und Vorläuferzellen sind blau mit rot markiert, neu erzeugte Epithelzellen sind nur rot markiert. Entero-endokrine Zellen sind gelb dargestellt. Zeiss LSM 880 Airyscan; © Denise Jassmann | Genetik | HHU

Maximum intensity projection der Autofluoreszenz eines Massonia spec. Pollen nach Deconvolution. © Anh-Dao Lam, Maryam Masrouri | Sinnesökologie & Sebastian Hänsch | CAi | HHU

Querschnitts eines M.musculus-blutgefäßes mit atherosklerotischer Plaque. Die Makrophagenzellen (gelb) des Immunsystems sammeln sich an der Plaque. Zusätzlich wurden die DNA (blau), die extrazelluläre Matrix (grün) und glatte Muskelzellen (rot) markiert. Zeiss LSM710; © Felicia Hartmann | AG Fischer | UKD

Sporen tragende Sporangiophore des Oomyceten Hyaloperonospora arabidopsidis auf einem mit Trichomen besetzten Blatt von Arabidopsis thaliana; Zeiss Rasterelektronenmikroskop Leo 1430 VP; © Michele Hohmann | Molekulare Ökophysiologie der Pflanzen & Steffen Köhler | CAi | HHU

Confocales Tilescan-Experiment eines ganzen Bienengehirns (A. melifera), bei das Aktin-Cytoskelett angefärbt wurde. Leica TCS SP8 STED 3X; © Vivien Bauer | Institut für Evolutionsgenetik | HHU

Frei lokalisieretes eYFP:GLXI;3 ohne Signalsequenz (grün) in A.thaliana-Protoplasten mit Markierung des Peroxisomenmarkers eCFP:PTS1 (magenta) und der Chloroplasten-Autofluoreszenz (blau). Zeiss LSM780; © Charis Dittmar & Meike Hüdig | Molekulare Physiologie & Biotechnologie der Pflanzen | HHU

mCling-Färbung (rot) von P.pastoris-Zellen die freies eGFP (grün) im Cytoplasma exprimieren. Olympus FV1000; © Kalpana Shanmugarajah & Katharina Gräfe | Biochemie I | HHU

Confocale Aufnahme mit Deconvolution von fluoreszenten Lipidstrukturen auf einem Deckgläschen, die bei Behandlung von HEp-2-Zellen mit markierten Liposomen entstanden. Leica TCS SP8 STED 3X; © Sofie Burgmer, Eugenia Chartschenko, Wandana Murugathas, Sebastian Hänsch | CAi | HHU

Doppelfärbung der Kernporenkomplexe Nup133 (rot) und Nup153 (grün) in HEp-2-Zellen mit Vergleich der STED-(links) und confokal-Aufnahme(links). Leica TCS SP8 STED 3X; © Sebastian Hänsch | CAi | HHU

Maximum intensity projection der Mitose in humanen HEp-2-Zellen, die Chromatin-(grün) in der Meta- (links), Ana- (rechts) und Interphase (unten) zeigt. Vimentin, ein Strukturfilament, das auch an den Nucleus bindet, ist rot gefärbt. Zeiss LSM 780; © Eugenia Chartschenko, Sofia Lorke, Marcel Färfers | CAi-Master-Modul WS18/19 | HHU

Foliae des Kleinhirns einer Maus, rot markiert sind die Somata von Neuronen und grün Intermediärfilamente (GFAP) in Makrogliazellen (Astrozyten und Bergmann Glia); © Franziska Decker & Dennis Bleck | Neurobiologie | HHU

Querschnitt einer Gerstenwurzel (Hordeum vulgare), RNA Insitu-Hybridisierung der mRNA eines Transkriptionsfaktors (HvPHB); Zeiss Axioskop 2 Plus; © Gwendolyn Kirschner | Entwicklungsgenetik | HHU

Blütenstand von Arabidopsis thaliana. Das zentrale Sprossmeristem, umgeben von sich entwickelnden jungen Blüten, zeigt die Lokalisation des fluoreszenzmarkierten Rezeptors CLAVATA1 (magenta). Die Zellwände wurden mit Propidiumiodid gefärbt (weiß). Zeiss LSM 780; © Grégoire Denay | Entwicklungsgenetik | HHU

Kardiomyocyten der Maus, in grün wurde das Protein Actinin angefärbt, in rot die Proteine Catenin und Laminin. Leica TCS SP8 STED 3X; © Daniela Müller | Institut für Herz- & Kreislaufphysiologie | UKD

Extremes Starklicht löst in einer licht-sensitiven Mutante der Grünalge Chlamydomonas reinhardtii die Struktur der Thylakoidmembran. Zeiss Transmissionselektronenmikroskop E902; © Petra Redekop, Photosynthese & Stressphysiologie der Pflanzen | HHU & Marion Nissen | CAi | HHU

Hochauflösende Aufnahme eines Protoplasten von N. benthamiana. Gezeigt ist die Lokalisation eines möglichen Transitpeptids (crTP, cyan) von P. chromatophora in den Plastiden (magenta). Singer et al., 2017. Leica TCS SP8 STED 3X, HyVolution 2 Modus; © Anna Singer, Eva Nowack | Mikrobielle Symbiose & Organellen Organisation | HHU & Sebastian Hänsch | CAi | HHU

Super-Hochauflösende Mikroskopie gefärbter Microgele. Die erhöhte Auflösung zeigt die Lokalisation des Signals im Randbereich der Gele. Leica TCS SP8 3X STED; STED und konfokal; © Stephan Schmidt, Tanja Paul | Organische Chemie & Makromolekulare Chemie, AG Kolloidale Bioadhäsion | HHU & Sebastian Hänsch | CAi | HHU

Integument von Peripatoides cf. novaezealandiae (Neuseeländischer Stummelfüßer); Zeiss Rasterelektronenmikroskop Leo 1430 VP; © Hartmut Greven | WE Biologie | HHU & Steffen Köhler | CAi | HHU

Wurzel von Arabidopsis thaliana, WAVE Linie zur Analyse von Membran Kompartimenten (Geldner et al., 2009), hier zeigt ein fluoreszenzmarkierter Marker die Membran der Vakuolen (grün). Die Zellwände wurden mit Propidiumiodid gefärbt (rot). Zeiss LSM 880 Airyscan, Airyscan Modus; © Maike Breiden | Entwicklungsgenetik | HHU

Querschnitt durch das Axonem einer Monozilie in murinem embryonalem Nierengewebe; Zeiss Transmissionselektronenmikroskop E902; © Antonia Wiegering | Entwicklungs- & Molekularbiologie der Tiere | HHU & Marion Nissen | CAi | HHU

Hippokampales Neuron aus der Maus. In blau wurde das Mikrotubuli-assoziierte Protein 2 (MAP-2) angefärbt, in grün das synaptische Protein Homer und in rot ein Neurotransmitter Rezeptor; Leica TCS SP8 STED 3X; © Barbara Biermann | Neuro- & Sinnesphysiologie | UKD

Blatt-Epidermis Zellen des Tabaks (N. benthamiana). Gezeigt ist die Expression der an der Signaltransduktion beteiligten Proteine BAM3 (rot) an der Plasmamembran und CORYNE (CRN (grün) in der netzartigen Struktur des Endoplasmatischen Retikulums; Zeiss LSM 880 Airyscan, Airyscan Modus; © Patrick Schultz | Entwicklungsgenetik | HHU

Parasagittalschnitt vom Hippokampus der Maus, reife Astrozyten, Intermediärfilamente (grün) und Membranen (rot), Zellkerne (blau); Nikon 90i mit C1, Plan Apo VC 20x/0.75; © Verena Barbarino, Jan Meyer & Bastian Görlich | Neurobiologie | HHU

Eikammer-Präparation von Drosophila melanogaster, Actin-Zytoskelett mit Tiefenkodierung; Olympus FV3000; © Thomas Zobel | CAi | HHU

Integument von Peripatoides cf. novaezealandiae (Neuseeländischer Stummelfüßer); Zeiss Transmissionselektronenmikroskop 902; © Hartmut Greven | WE Biologie | HHU & Marion Nissen | CAi | HHU

Endogenes Kinetochorsignal (grün) in zwei verschiedenen S. pombe (Hefe)Stämmen. Zellwand der Wildtyp Zellen (blau), Zellwand der Mutante (rot); Zeiss Spinning-Disc; © Visnja Jokopec | Eukaryotische Mikrobiologie | HHU

Zellen der humanen Zelllinie HEp-2, Aktin (grün), Zellkerne (cyan) “Structured Illumination Microscopy”; Zeiss ELYRA PS; © Thomas Zobel | CAi | HHU

Sprossmeristem Arabidopsis thaliana, Zellwände mit Propidiumjodid gefärbt, Maxium Intensity Projection; Zeiss LSM 780; © Jenia Schlegel | Entwicklungsgenetik | HHU

Zellen der humanen Zelllinie HEp-2, Aktin (cyan), Zellkerne (cyan), Vimentin (rot), Ki-67 (grün), Zellkerne (blau); Zeiss LSM 780; © Yvonne Stahl | Entwicklungsgenetik | HHU

Radula von Elysia viridis (Grüne Samtschnecke); Zeiss Rasterelektronenmikroskop Leo 1430 VP; © Cessa Rauch | Molekulare Evolution | HHU & Steffen Köhler | CAi | HHU

Zellen der humanen Zelllinie HEp-2, Vimentin STED-Modus; Leica TCS SP8 STED 3X; © Sebastian Hänsch | CAi | HHU

Promotor-GUS-Aktivitätsanalyse in Arabidopsis thaliana, nach Zugabe von X-Gluc; Canon EOS 6D mit Canon Marco 100 mm 1:2,8; © Marion Eisenhut | Biochemie der Pflanzen | HHU & Steffen Köhler | HHU

Protoplasten von Nicotiana tabacum,Cytoplasma und Zellkerne (grün), Mitochondrien (rot), Chloroplasten (blau); Leica TCS SP8 STED 3X; © Sandra Kirschner | Entwicklungs- & Molekularbiologie der Pflanzen | HHU

Drosophila melanogaster Larve. Muskeln sind mit Phalloidin angefärbt, sowie Postsynapsen mit anti Dlg (grün). Aufgrund einer Überexpression sind viele dorsale Muskeln nicht innerviert; Zeiss LSM 710; © Caroline Heymann | Funktionelle Zellmorphologie | HHU

Mit dem Brandpilz Thecaphora thlaspeos infiziertes Blatt, Pilz (grün), Blattvenen (rot); Zeiss LSM 780; © Kaitlyn Courville | Mikrobiologie | HHU

Isoliertes Neuron aus dem Hippocampus der Ratte, Mikrotubuli-assoziertes Protein (blau), membranständiges Protein (rot); Leica TCS SP8 STED 3X; © Barbara Biermann | Neuro- & Sinnesphysiologie | UKD & Tim Abel, Filip Hasecke, Luca Groß | CAi-Mastermodul WS15/16 | HHU

Isolierter Protoplast aus Nicotiana benthamiana Blattgewebe, Expressionsmuster eines Transitpeptids aus der Rotalge Galleria sulphuraria (grün), Chlorophyll-Autofluoreszenz (rot); Zeiss LSM 510 META; © Fabio Facchinelli | Biochemie der Pflanzen | HHU

Murine embryonale Fibroblasten nach Überexpression eines endosomalen Proteins, Kontrastierung mit Uranylacetat und Blei; Zeiss Transmissionselektronenmikroskop 902; © Jessica Hausmann | Genetik | HHU

Hand vom Teichmolch Lissotriton vulgaris, Aufhellungspräparat, Knochen Alizarinrot, Knorpel Alcianblau; Olympus Vanox AH-2; © Hartmut Greven | WE Biologie | HHU

Zelle der humanen Zelllinie HEp-2, Aktin (grün), Vimentin (rot), Zellkern/ Chromosomen (blau); Leica TCS SP8 STED 3X; © Yvonne Stahl | Entwicklungsgenetik | HHU & Laura Czempik, Filip Hasecke, Tim Blomeier | CAi-Mastermodul WS15/16 | HHU

Kalkskeletts eines Seeigels Parechinus angulosus, im Bereich einer Interambulakralplatte; Zeiss Rasterelektronenmikroskop Leo 1430 VP; © Jacqueline Dziergwa | Ökophysiologie | HHU & Steffen Köhler | CAi | HHU

Dissoziierte embryonale Kardiomyozytenkulturen der Ratte, HCN4 Ionenkanalprotein (rot), Tight junction Protein ZO1 (grün), Aktinzytoskelett (cyan) und Zellkerne (blau); Zeiss LSM 710; © Nadine Erlenhardt | Neuro- und Sinnesphysiologie | UKD

Arabidopsis thaliana, Blatt mit Trichomen; Canon EOS 6D mit Canon Lupenobjektiv MP-E 65 mm 1:2,8; © Steffen Köhler | HHU

Mit dem Brandpilz Thecaphora thlaspeos infiziertes Blatt, Übersicht aus Tilescans, Pilz (grün), Blattgewebe (rot); Zeiss LSM 780; © Kaitlyn Courville | Mikrobiologie | HHU

Zelle der humanen Zelllinie HEp-2 mit Zytoskelettfärbung. Vimentin (rot), Zellkern (blau), obere Bildhälfte STED Modus, untere Bildhälfte konfokaler Modus; Leica TCS SP8 STED 3X; © Yvonne Stahl | Entwicklungsgenetik | HHU & Laura Czempik, Filip Hasecke, Tim Blomeier | CAi-Mastermodul WS15/16 | HHU

Blattepidermis Nicotiana benthamiana, Plasmamembranständiger Rezeptor (grün), Chloroplasten Autofuoreszenz (cyan), Zellkerne (blau), Endoplasmatisches Reticulum (rot); Olympus Fluoview 1000; © Stefanie Weidtkamp-Peters | CAi | HHU & Tim Abel, Thomas Breuer, Michael Dietrich | CAi-Mastermodul WS15/16 | HHU

Drosophila melanogaster, neuromuskuläre Endplatte an Muskel 4, Gliazellen (grün), Glutamatrezeptoren (blau) und aktive Zonen (rot); Zeiss Elyra PS; © Rebekka Ochs | Funktionelle Zellmorphologie | HHU

Partikel eines Silica-Materials, Typ SBA-15; Zeiss Rasterelektronenmikroskop Leo 1430 VP; © Vlada Urlacher | Biochemie II | HHU & Steffen Köhler | CAi | HHU

Spezialzelle aus der Epidermis der Barteln von Centromochlus perugiae; Zeiss Transelektronenmikroskop 109; © Hartmut Greven | WE Biologie | HHU & Marion Nissen | CAi | HHU

Endoplasmatisches Retikulum in Blattepidermiszellen von Nicotiana benthamiana, markiert mit BTI2-GFP; Zeiss LSM 780; © Marc Somssich | Entwicklungsgenetik | HHU

Eigelege der Schlundsackschnecke Placidia dendritica; Canon EOS 6D Lupenopjektiv MP-E 65 mm 1:2,8; © Steffen Köhler | HHU

Teliosporen des Brandpilzes Thecaphora thlaspeos keimen auf der Blattoberfläche; Zeiss Rasterelektronenmikroskop Leo 1430 VP; © Kaitlyn Courville & Vera Göhre | Mikrobiologie | HHU & Steffen Köhler | Cai | HHU

Vater-Pacini-Körperchen, Masson-Goldner-Trichromfärbung, Fingerbeere Mensch; Zeiss Axioplan Mot 2; © Steffen Köhler | CAi | HHU

Transiente Expression des CLV1 Rezeptors an der Plasmamembran (grün) in Blattepidermiszellen von Nicotiana benthamiana, Autofluoreszenz der Chloroplasten in Orange; Zeiss LSM 780; © Yvonne Stahl | Entwicklungsgenetik | HHU

Arabidopsis thaliana, Querschnitt durch eine Schote; Zeiss Transelektronenmikroskop 109; © Rüdiger Simon | Entwicklungsgenetik | HHU & Ferdi Grawe | Genetik | HHU

Drosophila melanogaster, drittes Larvenstadium, Muskel 6 und 7, Postsynapse (grün), F-Aktin (rot), α-Tubulin (blau); Zeiss LSM 710; © Marc-Normann Scheuer | Funktionelle Zellmorphologie | HHU

Tarenaya hassleriana Blattquerschnitt, Plasmamembran (grün), Chloroplasten (rot); Zeiss LSM 780; © Canan Külahoglu | Biochemie der Pflanzen | HHU & Stefanie Weidtkamp-Peters | CAi | HHU

Catalpa bignonioides, Quetschpräparat des Fruchtblattes, Anilinblau Färbung: Gewebe (blau), Pollenschläuche (grün); Zeiss Axioplan Mot 2; © Susanne Polap | Sinnesökologie | HHU & Stefanie Weidtkamp-Peters | Cai | HHU

Maus Fibroblastenzelle mit Notch 2 Rezeptor (rot) an der Zellmembran und endozytiert, Tubulin Zytoskelett (grün) und Zellkern (blau); Zeiss ELYRA PS, SIM Modul, 3D-Rendering; © Bernhard Migdal | Genetik | HHU

Drosophila melanogaster, drittes Larvenstadium, oben Motorneurone (rot), unten Motorneurone, Muskeln und Postsynapsen (grün); Zeiss LSM 710; © Claudia Grossmann | Funktionelle Zellmorphologie | HHU

Arabidopsis thaliana, Abdruck eines Keimlings, Blattepidermiszellen mit Stomata und Trichomen; Zeiss Rasterelektronenmikroskop Leo 1430 VP; © Petra Zadnikova | Entwicklungsgenetik | HHU

Dentritische Zellen des Knochenmarks aus BALB/C Mäusen infiziert mit modifiziertem Vaccinia-Virus Ankara, das gleichzeitig für das Modellantigen OVA (rot) und MHC I Moleküle (grün) codiert; Zeiss LSM 710; © Sha Tao | Virologie | UKD

Meeresnacktschnecke Elysia timida; Canon EOS 40 D mit Canon Makro 60 mm 1:2,8; © Steffen Köhler | HHU

Drosophila melagonaster, Ommatidium des Facettenauges mit 7 Photorezeptorzellen, Ultradünnschnitt (100nm); Zeiss Transelektronenmikroskop 109; © Ferdi Grawe | Genetik | HHU

Zellen der humanen Zelllinie HEp-2 mit Zytoskelettfärbung: Tubulin (grün), Cytokeratin (gelb), Aktin (rot), Zellkern (blau); Zeiss LSM 780; © Carolin Coenen & Rebecca Drisch | CAi-Mastermodul WS13/14 | HHU

Kristalle einer Ruthenium(II) Chalkon Komplexverbindung; Zeiss Rasterelektronenmikroskop Leo 1430 VP; © Annika Herbst | Anorganische- & Strukturchemie I | HHU & Steffen Köhler | CAi | HHU

Zelle der humanen Zelllinie HT-1080, mitochondriale Topoisomerase I (grün), transkriptionsaktive Nukleoide (rot); Zeiss ELYRA PS, SIM Modul; © Beatrice Bornholz & Stefan Sobeck | Klinische Chemie | UKD & Stefanie Weidtkamp-Peters | CAi | HHU

Köperoberfläche (dorsal) der tropischen endogäischen Assel Trichorhina tomentosa; Zeiss Rasterelektronenmikroskop Leo 1430 VP; © Hartmut Greven | HHU & Steffen Köhler | CAi | HHU

Blattepidermis Nicotiana bethamiana, CLV1 Rezeptor an der Plasmamembran (grün), Chloroplasten Autofluoreszenz (orange), Endoplasmatisches Reticulum (rot); Olympus Fluoview 1000; © Stefanie Weidtkamp-Peters | CAi | HHU

Arabidopsis thaliana, Infloreszenzmeristem, Auxin- Efflux-Transporter PIN1 (grün), Chlorophyll Autofluoreszenz (rot); Zeiss LSM 780; © Petra Zadnikova | Entwicklungsgenetik | HHU

Meristem Ackerschmalwand (Arabidopsis thaliana); Zeiss Rasterelektronenmikroskop Leo 1430 VP; © Julia Schmid | Entwicklungsgenetik | HHU

Zellwände (rot) und Cytoplasma (grün) in einer Wurzel der Ackerschmalwand (Arabidopsis thaliana); Zeiss LSM 510 Meta; © CAi | HHU

Berufkraut (Erigeron); Canon EOS 40 D, 60mm Makro; © Steffen Köhler | HHU

Aktinfilamente (gelb), Cytoplasma (rot) und Chromatin im Zellkern (blau) in menschlichen Krebszellen; Zeiss LSM 780 © CAi | HHU

Embryoepidermis Fruchtfliege (Drosophila melanogaster ); Transelektronenmikroskop Zeiss 902; © Ferdinand Grawe | Genetik | HHU

Aktin- und Vimentinfilamente (grün und gelb) PML-Kernkörperchen (rot) und Chromatin im Zellkern (blau) in menschlichen Krebszellen; Zeiss LSM; © CAi | HHU

Zelle Bauchspeicheldrüse (Pankreas); Zeiss Rasterelektronenmikroskop Leo 1430 VP; © Steffen Köhler | CAi | HHU

Marienkäfer (Coccinellidae); Canon EOS 40 D, 65mm Lupenobjektiv; © Steffen Köhler | HHU

Endoplasmatisches Retikulum (grün) und Zellwand (blau) in einem Tabakblatt; Zeiss LSM 780; © CAi | HHU

Lanzettfischchen (Branchiostoma); Olympus BX 50; © Steffen Köhler | CAi | HHU

Wasserpest (Elodea canadensis); Zeiss Rasterelektronenmikroskop Leo 1430 VP; © Steffen Köhler | CAi | HHU

Strahlentierchen (Radiolaria); Zeiss Axiophot; © Steffen Köhler | CAi | HHU

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